Código: 37560 – A NOVA Unidade Tail-Flick, estimulação térmica da cauda, de acordo com o método D’Amour & Smith
Código: 37560
O Ugo Basile Tail Flick foi projetado para medir com precisão o limiar nociceptivo ao estímulo infravermelho do calor na cauda do rato ou camundongo.
NOVO: tela de toque brilhante para usabilidade aprimorada e menus intuitivos
NOVO: detecção automática de movimento da cauda do pedal acionado para melhor repetibilidade e sensibilidade humana
O Ugo Basile Tail Flick é o mais utilizado e validado mundialmente: mais de 3.000 citações e décadas de experiência!
Como funciona: o operador inicia o estímulo: quando o animal sente dor e sacode a cauda, um sensor a detecta, para o cronômetro e desliga a lâmpada. O tempo de reação do animal é então determinado e registrado automaticamente.
O Tail Flick consiste basicamente em uma fonte de IR, cuja energia radiante de intensidade ajustável é focada na cauda do animal por um espelho parabólico incorporado.
O animal é segurado pelo operador no painel superior desobstruído do instrumento de forma que sua cauda, colocada sobre uma janela embutida, receba a energia IV. O instrumento pode ser usado convenientemente para estimular a cauda do mouse; quando reconectados, os suportes do mouse estão disponíveis como opcionais.
O tempo de latência e intensidade são exportados automaticamente para um cartão de memória. Stick USB e software incluídos!
- Características e Benefícios
- Especificações
- Aplicação
- Componentes e Acessórios
- Literatura e Documentação
| CARACTERÍSTICA | BENEFÍCIO |
|---|---|
NOVO: Tail-flick é pontuado automaticamente ou manualmente NOVO: totalmente controlado por uma tela de toque de 4,3 “ Chave de memória USB e software incluídos Sem elementos salientes e superfície desobstruída A energia radiante pode ser calibrada com o Radiômetro opcional | Pontuação precisa, livre de variabilidade e flexibilidade humanas Menus ultra-intuitivos e cores brilhantes para facilidade de uso Funciona como autônomo ou conectado ao PC Trabalhe confortavelmente e obtenha excelente reprodutibilidade As unidades arbitrárias podem ser convertidas e o uso da lâmpada compensado |
| Entrada e leitura de comando | Tela de toque colorida de 4,3 “ |
| Exportação de dados | formato .csv via chave USB |
| Iniciar experimento | Via pedal switch ou via ícone de início na tela de toque (ou via TTL) |
| Parar Experiência | Via pedal switch, ícone de início na tela de toque, corte (ou via TTL) |
| Modo de medição | Manual (pedal) ou automático (fibra ótica) |
| Intensidade IR | Ajustável no intervalo 01-99 (em passos de um dígito) |
| Tempo de latência | exibido no visor gráfico, em etapas de 0,1s |
| Cortar o tempo | Ajustável de 5 a 30 segundos |
| Portabilidade de dados | Via pen drive USB fornecido |
| Calibration | Via radiômetro IR apropriado (opcional) |
| TTL / IO | Disponível como entrada ou saída |
| Nível de som | <54db |
| Fisica | |
| Peso total | 2,8 kg |
| Peso | 3Kg aprox. |
| Dimensões | 37,5 (w) x38,5 (d) x 13 (h) cm (montado) |
| Dimensões da embalagem | 46x35x28cm |
| garantia | A unidade Tail Flick é coberta por uma garantia de 24 meses. |
A Tail Flick Unit consiste basicamente em uma fonte de IR, cuja energia radiante de intensidade ajustável é focada por um espelho parabólico incorporado na cauda do rato.
O animal é segurado pelo operador no painel superior desobstruído do instrumento de forma que sua cauda, colocada sobre uma janela embutida, receba a energia IV.
O operador inicia o estímulo e o contador de tempo de reação relacionado pelo pedal ou pelo ícone de inicialização da tela de toque.
Quando o animal sente dor e sacode a cauda, um sensor detecta, para o contador do tempo de reação e desliga a lâmpada. O tempo de reação do animal é então determinado automaticamente para o 0,1 segundo mais próximo (a menos que a opção de pontuação manual esteja ativada, caso em que é o cientista que deve parar o contador pressionando o pedal).
| 37560 | Unidade Tail Flick, pacote padrão, incluindo: |
| 37215-303 | Interruptor de pedal |
| E-AU 041 | Chave de memória, incluindo o software Xpad |
| 52010-323 | cabo USB |
| E-HR 002 | Lâmpada IR sobressalente (halogênio “Bellaphot”, Mod. 64607 OSRAM, 8V-50W) |
| E-BT 008 | Bateria tipo CR2032 |
| E-FT010-1 | 2xFuseT1.25A – 6×32 mm |
| OPCIONAL | |
| 37360-325 | Suporte para mouse (25 mm ID) |
| 37360-330 | Suporte para mouse (30 mm ID) |
| 37300 | Radiômetro IR de fluxo de calor (consulte também o parágrafo 9.1 ) |
Bibliografia em 37360
- Os compostos corticosteróides prednisolona e vamorolona não alteram o fenótipo de nocicepção e exacerbam a lesão hepática em camundongos com anemia falciforme LEF Almeida, JM Damsker, S. Albani, N Afsar… – Scientific Reports, 2018 (Ratos)
- Effect of alpha-lipoic acid and its Nano-formulation on streptozotocin induced diabetic neuropathy in Rats P Verma – 2018
- β-Endorphin attenuates collagen-induced arthritis partially by inhibiting peripheral pro-inflammatory mediators X He, L Huang, S Qiu, X Yin, Y Shen, Y Wu, Y Jiang… – … and Therapeutic Medicine, 2018
- Synthesis and Structure-Activity Relationships of LP1 Derivatives: N-Methyl-N-phenylethylamino Analogues as Novel MOR Agonists R Turnaturi, C Parenti, O Prezzavento, A Marrazzo… – Molecules, 2018
- Onosma bracteatum wall: A Potent analgesic agent H Imran, A ur Rahman, T Sohail, SIH Taqvi, Z Yaqeen – Bangladesh Journal of …, 2018
- Antinociceptive Effect of Ficus bengalensis Bark Extract in Experimental Models of Pain K Rajdev, S Jain, CH Mahendra, SK Bhattacharaya – 2018
- The Roman high-and low-avoidance rats differ in the sensitivity to shock-induced suppression of drinking and to the anxiogenic effect of pentylenetetrazole MG Corda, MA Piludu, F Sanna, G Piras, M Boi… – … Biochemistry and Behavior, 2018
- Substituted-quinoxaline-type bridged-piperidine compounds as ORL-1 modulators N Tsuno, J Yao – US Patent 9,890,164, 2018
- 3-Hydroxy-piperidinyl-N-benzyl-acyl-arylhydrazone derivatives reduce neuropathic pain and increase thermal threshold mediated by opioid system NM dos Santos, NC Pereira, APS de Albuquerque… – Biomedicine & …, 2018
- Differential spinal and supraspinal activation of glia in a rat model of morphine tolerance V Jokinen, Y Sidorova, H Viisanen, I Suleymanova… – Neuroscience, 2018
- Interactions of (2S, 6S; 2R, 6R)‐Hydroxynorketamine, a Secondary Metabolite of (R, S)‐Ketamine, with Morphine TO Lilius, H Viisanen, V Jokinen, M Niemi, EA Kalso… – Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology, 2017
- Antinociceptive and Anti-inflammatory Effects of Triterpenes from Pluchea quitoc DC. Aerial Parts. FA da Silva Nobre, FEB Vidal, GMSG Pinheiro… – Pharmacognosy research, 2017
- Site-specific regulation of P2X7 receptor function in microglia gates morphine analgesic tolerance H Leduc-Pessah, NL Weilinger, CY Fan, NE Burma… – Journal of Neuroscience, 2017
- Protoxin-II Variants and Methods of Use M Flinspach, A Wickenden – US Patent 20,170,334,959, 2017
- Dihydroetorphines and Their Preparation S Whitelock, DP Harding, CD Turner – US Patent 20,170,267,687, 2017
- Pharmacological characterization of novel synthetic opioids (NSO) found in the recreational drug marketplace Michael H.Baumann, j.neuropharm.2017.08.016, 2017
- Effect of electroacupuncture on thermal pain threshold and expression of calcitonin-gene related peptide, substance P and γ-aminobutyric acid in the cervical dorsal L Qiao, J Liu, L Tan, H Yang, X Zhai, Y Yang – Acupuncture in Medicine, 2017
- Heat shock protein 90 (Hsp90) promotes opioid-induced anti-nociception by an ERK Mitogen Activated Protein Kinase (MAPK) mechanism in mouse brain W Lei, N Mullen, S McCarthy, C Brann, P Richard… – Journal of Biological …, 2017
- Morphine dosing strategy plays a key role in the generation and duration of the produced antinociceptive tolerance AK Paul, N Gueven, N Dietis – Neuropharmacology, 2017
- Genetic dissociation of morphine analgesia from hyperalgesia in mice GF Marrone, V Le Rouzic, A Varadi, J Xu… – Psychopharmacology, 2017
- Inhibition of substance P-induced defensive behavior via neurokinin-1 receptor antagonism in the central and medial but not basolateral nuclei of the amygdala in … GS Bassi, MC Carvalho, RC Almada, ML Brandão – Progress in Neuro- …, 2017
- Injectable peptide-based hydrogel formulations for the extended in vivo release of opioids C Martin, E Oyen, Y Van Wanseele, TB Haddou… – Materials Today Chemistry, 2017
- Insensitivity to pain induced by a potent selective closed-state Nav1. 7 inhibitor M Flinspach, Q Xu, AD Piekarz, R Fellows, R Hagan… – Scientific Reports, 2017
- Screening Of The Central Nervous System Action Of Agarwood Leaves Extract In Female Ovariectomized Rats P Chiangsaen, P Taepavarapruk, E Wongwad…, 2016
- Altered cytokine profile, pain sensitivity, and stress responsivity in mice with co-disruption of the developmental genes Neuregulin-1× DISC1 L Desbonnet, R Cox, O Tighe, D Lai, RP Harvey… – Behavioural Brain Research, 2016
- Effect of electroacupuncture on the cervicospinal P2X7 receptor/fractalkine/CX3CR1 signaling pathway in a rat neck-incision pain model YH Gao, CW Li, JY Wang, LH Tan, CL Duanmu… – Purinergic Signalling, 2016
- Thalidomide attenuates the development and expression of antinociceptive tolerance to μ-opioid agonist morphine through l-arginine-iNOS and nitric oxide pathway MI Khan, S Ostadhadi, F Mumtaz, M Momeny… – Biomedicine & …, 2016
- T.O. Lilius et alia: “The Mineralocorticoid Receptor Antagonist Spironolactone Enhances Morphine Antinociception” Eur. J. of Pain online view, 201
- J.W. Little et alia: “Spinal Mitochondrial-Derived Peroxynitrite Enhances Neuroimmune Activation During Morphine Hyperalgesia and Antinociceptive Tolerance” Pain 154 (7): 978-986, 2013
- P.J. McLaughlin et alia: “Behavioral Effects of the Novel Potent Cannabinoid CB1 Agonist AM 4054” Pharmacology Biochemistry and Behavior 109: 16-22, 2013
- T.A. Kosten et alia: “A Morphine Conjugate Vaccine Attenuates the Behavioral Effects of Morphine in Rats” Progr. in Neuro-Psychopharmacol. and Biol. Psychiatry 45: 223–229, 2013
- T.C. Chen et alia: “Spontaneous inflammatory Pain Model From a Mouse Line With N-ethyl-N-nitrosourea Mutagenesis” J. Biomed. Science 19 (55): 2–15, 2012
- J. Walsh et alia: “Disruption of Thermal Nociceptive Behaviour in Mice Mutant for the Schizophrenia-Associated Genes NRG1, COMT and DISC1” Brain Res. 1348: 114-119, 2012
- K. Guillemyn et alia: “In vivo Antinociception of Potent mu Opioid Agonist Tetrapeptide Analogues and Comparison with a Compact Opioid Agonist-neurokin 1 Receptor Antagonist Chimera” Molecular Brain 5 (4): 2-11, 2012
- A.J. Morrison et alia: “Design, Synthesis, and Structure–Activity Relationships of indole-3-heterocycles as Agonists of the CB1 Receptor” Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters 21: 506-509, 2011
- M. Spetea et alia: “In vitro and in vivo Pharmacological Profile of the 5-benzyl Analogue of 14-methoxymetopon, a Novel μ Opioid Analgesic with Reduced Propensity to Alter Motor Function” Eur. J. Pharmac. Sciences 41: 125-135, 2010
- C.A. Boehm et alia: “Midazolam Enhances the Analgesic Properties of Dexmedetomidine in the Rat” Vet. Anaesthesia and Analgesia 37 (6): 550-556, 2010
- M.A. Philips et alia: “Myg1-Deficient Mice Display Alterations in Stress-Induced Responses and Reduction of Sex-Dependent Behavioural Differences” Behav. Brain Res. 207: 182-195, 2010
- C. Dawson et alia: “ Dexmedetomidine Enhances Analgesic Action of Nitrous Oxide” Anesthesiology 100 (4): 894−904, 2004
- P. Tolu et alia: “ Effects of Long-Term Acetyl-L-carnitine Administation in Rats: I. Increased Dopamine Output in Mesocorticolimbic Areas and Protection Toward Acute Stress Exposure” Neuropsychopharmacol. 27 (3): 410-420, 2002
- R. Nadeson et alia: “ Potentiation by Ketamine of Fentanyl Antinociception. I. An Experimental Study in Rats Showing that Ketamine Administered by Non-Spinal Routes Targets Spinal Cord Antinociceptive Systems” Br. J. Anaesthesia 88 (5): 685−691, 2002
- L. Jasmin et alia: “ The NK1 Receptor mediates Both the Hyperalgesia and the Resistance to Morphine in Mice Lacking Noradrenaline” PNAS 99 (2): 1029−1034, 2002
- G.L. Fraser et alia: “ Antihyperalgesic Effects of Opioid Agonists in a Rat Model of Chronic Inflammation” Br. J. Pharmacol. 129: 1668−1672, 2000
- M. Xu et alia: “ Effects of Radolmidine, a Novel α2- Adrenergic Agonist Compared with Dexmedetomidine in Different Pain Models in the Rat” Anesthesiology 93 (2): 473−481, 2000
- A. Köster et alia: “Targeted Disruption of the Orphanin Fq/Nociceptin Gene Increases Stress Susceptibility and Impairs Stress Adaptation In Mice” Neurobiology 96 (18): 10444-10449, 1999
- I. Sora et alia: “Opiate Receptor Knockout Mice Define µ Receptor Roles in Endogenous Nociceptive Responses and Morphine-Induced Analgesia” Neurobiology 94: 1544-1549, 1997C.T. Dourish et alia: “The Selective CCK-B Receptor Antagonist L-365,260 Enhances Morphine Analgesia and Prevents Morphine Tolerance in the Rat” Europ. J. Pharmacol. 176: 35-44, 1990
- P.W. Nance & J. Sawinok: “Substance P-Induced Long-Term Blockade of Spinal Adrenergic Analgesia: Reversal by Morphine and Naloxone” J. Pharmacol. Exp. Therap. Vol. 240, No. 3: 972-977, 1987